1 Петрова М.Б. 1 Мохов Е.М. 1 сергеев О.М. 1 Сєров О.В. 2
1 ГБОУ ВПО Тверській ДМУ МОЗ Росії
2 ГБУЗ Солнечногорская ЦРЛ
В експерименті на 46 самцях білих щурів вивчені гістоморфологіческіе зміни тканин лінійних ран шкіри, ушита біологічно активним шовним матеріалом, що представляє собою полікапроамідную нитку в оболонці з хітозану з включенням антибактеріального препарату ципрофлоксацину і астрагерма з групи германійсодержащіх органічних сполук. Біоптати регенеруючих тканин через 3, 5 і 7 днів від нанесення лінійної рани довжиною 5 см піддавалися гістологічної проводці за стандартними методиками з подальшим отриманням мікропрепаратів. Дослідження показало ефективність застосування нового шовного матеріалу при моделюванні загоєння ран шкіри первинним натягом. Морфологічно це було підтверджено процесами ангіогенезу і проліферації фібробластів, що відбуваються при формуванні грануляційної тканини, її прискореної трансформацією в сполучну, збільшенням темпів епітелізації зони колишнього ушкодження. Виявлені властивості нових біологічно активних шовних матеріалів можуть бути підставою їх перспективного застосування в клінічній практиці, оскільки сприяють зниженню числа гнійних післяопераційних ускладнень, а, отже, скорочення термінів реабілітації.
полікапроамідная нитка
високомолекулярний хітозан
ципрофлоксацин
астрагерм
регенерація
грануляційна тканина
проліферація
ангіогенез.
1. Адамян А.А., Добиш С.В., Чекмарьова І.А., Втюрін Б.В., Волков А.А., Терехова Р.П., Кочергіна Є.В. Експериментальне вивчення специфічної активності ранових покриттів з наноструктурних покриттям срібла // Аннали пластичної, реконструктивної та естетичної хірургії - 2009. - № 3. - С.77-88.
2. Мохов Е.М., Петрова М.Б., Жеребченко А.В. Морфологічна оцінка перебігу фази запалення при загоєнні експериментальної рани, захистом за допомогою нового біологічно активного шовного матеріалу. // Фундаментальні дослідження. - 2014.- № 7 (частина 2). - С. 353-356.
3. Мохов Е.М., Сергєєв А.Н. Можливості та перспективи застосування в хірургії біологічно активного шовного матеріалу // Російський медичний журнал - 2007. - № 2. - С. 18-21.
4. Петрова М.Б., Мохов Е.М., Сергєєв А.Н., Сєров О.В. Вплив біологічно активних шовних матеріалів на перебіг ранового процесу в шкірі: цитологічна характеристика // Фундаментальні дослідження. - 2015. - № 1 (частина 10). - С. 2076-2079.
5. Петрова М.Б., Павлова Н.В., Червінец В.М., Овчинников М.М., Брянцева В.М., Харитонова Є.О., Шестакова В.Г. Оцінка впливу гелю L-цистеїну нітрату срібла на репаративні процеси в шкірі і активність мікробної флори // Вісник ТвГУ. Серія «Біологія та екологія». - 2010. -Випуск 17.- № 16. - С. 30-35.
6. Ming. X., Nichols. M., Rothenburger S. In vivo antibacterial efficacy of MONOCRYL plus antibacterial suture (Poliglecaprone 25 with triclosan) // Surg Infect (Larchmt). - 2007 Apr. - Vol. 8, N 2. - P.209-14.
7. Ming X, S. Rothenburger. S., Nichols. In vivo and in vitro antibacterial efficacy of PDS plus (polidioxanone with triclosan) suture // Surg Infect (Larchmt). - 2008 Aug. - Vol. 9, N 4. - P. 451-57.
8. Suárez Grau J. Prevention of surgical infection using reabsorbable antibacterial suture (Vicryl Plus) versus reabsorbable conventional suture in hernioplasty. An experimental study in animals // Cir Esp.- 2007 Jun. - Vol. 81, N 6. - P. 324-29.
Удосконалення якості надання першої медичної допомоги і проблема загоєння ран шкіри не втрачає своєї актуальності протягом багатьох десятиліть. Основною методологією вирішення цієї проблеми є принцип управління раневим процесом за рахунок спрямованого місцевого впливу на нього біологічно активними або речовинами з антимікробну активність [5]. У розвитку цих аспектів безсумнівний інтерес представляють досягнення сучасної хімії, що дозволяють розробляти біологічно активні шовні матеріали, що володіють властивістю протистояти розвитку інфекційних ускладнень в рані і покращувати репарацію тканин, не надаючи при цьому шкідливого впливу на організм [6,7].
На думку ряду авторів, які досліджували процеси регенерації післяопераційних ран і міжкишкових соустий в експериментальних умовах, доведені переваги використання біологічно активних хірургічних шовних матеріалів комплексного дії [2, 3]. У наших роботах [4] було показано, що імплантація в рану шовного матеріалу, що містить астрагерм і антибактеріальний препарат, призводить до інтенсифікації виселення в область пошкодження клітинних елементів з одночасним підвищенням їх функціональної активності.
У зв'язку з цим є доцільною подальша розробка і експериментальна апробація нових видів біологічно активних ниток і їх подальше впровадження в хірургічну практику [8].
Мета цього дослідження полягала у вивченні на експериментальних тварин гістоморфологічних змін тканин лінійних ран шкіри, ушита за допомогою розроблюваних біологічно активних шовних матеріалів.
матеріали та методи
Дослідження проведені на 46 самцях безпородних білих щурів, масою 140-160 г. Утримання тварин і постановка експерименту проведені відповідно до вимог наказу № 267 МОЗ РФ від 19.06.2003 р, а також міжнародними правилами «Guideforthe Careand Useof Laboratory Animals» .Анестезія здійснювалася шляхом інгаляції тваринам парів ефіру. Після обробки операційного поля щурам наносили лінійні полнослойних рани шкіри довжиною 5 см з наступним їх ушиванием. Відповідно до виду використовуваного шовного матеріалу виділено дві групи експериментальних тварин: контрольна, де використовувалася полікапроамідная нитка без лікарських препаратів (ПН) і досвідчена, в якій рани зашивали полікапроамідной ниткою в оболонці з високомолекулярного хітозану з ципрофлоксацином і астрагермом (ПН + ВХ + ЦФ + АГ). Тестований біологічно активний шовний матеріал являє собою кручену полікапроамідную нитку в оболонці з природного полімеру хітозану, з включенням антибіотика ципрофлоксацину і препарату з групи германійсодержащіх органічних сполук астрагерма. Зразки шовного матеріалу отримані у Всеросійському науково-дослідному інституті синтетичних волокон (ВАТ «ВНІІСВ»).
Після накладення швів тварини обох груп містилися в клітини і містилися в стандартних умовах віварію. Виведення щурів з експерименту проводилося шляхом передозування ефірного наркозу відповідно до вимог Європейської конвенції щодо захисту експериментальних тварин 86/609 EEC через 3, 5 і 7 днів від початку експерименту. Біоптати регенеруючих тканин, отримані в ці терміни, піддавалися гістологічної проводці за стандартними методиками з подальшим отриманням мікропрепаратів.
Результати та їх обговорення
Аналіз результатів експериментального дослідження показав, що через 3 дні після нанесення травми у тварин контрольної групи область пошкодження була покрита щільним, іноді фрагментованим струпом, що складається із зруйнованих і дегенеративно змінених клітинних елементів, в основному нейтрофільних лейкоцитів. Під струпом розташовувався невеликий по ширині лейкоцитарний вал, який стелить струп на всьому протязі дефекту. Ситуація, що формується грануляційна тканина займала центральне положення в області пошкодження і містила численні капіляри і круглоклітинна елементи, які утворювали вогнищеві скупчення.
У тварин дослідної групи, рани яких зашивались ПН + ВХ + ЦФ + АГ ниткою, в цей же термін великий фрагментований струп покривав рану частково, а іноді був відділений від підлеглих тканин на всьому протязі. У центрі рани розташовувалася зріла грануляційна тканина, яка містить різні гематогенні і тканинні клітинні елементи, з країв рани з'являлися поодинокі макрофаги, фібробласти і колагенові волокна. Спостерігалося зростання новоствореного епітелію, протяжність регенерату склала 574,51 ± 12,46 мкм проти 589,01 ± 14,58 мкм в групі контролю; на кордоні з неушкодженим епідермісом виявлялася його гіпертрофія.
Через 5 днів від початку загоєння у тварин контрольної групи, рани яких зашивались ПН, в центрі пошкодження зберігалися залишки фрагментированного струпа. Під струпом локалізувався невелику ділянку грануляційної тканини, яка містить круглоклітинна елементи. На кордоні з неушкодженою шкірою епітелій був різко гіпертрофований, регенерат відрізнявся освітою невеликих виростів базальної мембрани в підлягає тканину (рис.1).
Мал. 1. Гіпертрофія молодого епітелію в області рани. 5 днів після операції. Група контролю. Гематоксилін-еозин. Про. 40х.
У тварин дослідної групи (ПН + ВХ + ЦФ + АГ) в цей же термін відбувалася часткова або повна епітелізація пошкоджень. У окремих щурів на поверхні рани сформувався рівний епітеліальний пласт, що складається з 8-10 рядів клітин з рівною, що не утворює виростів в товщу дерми, базальноїмембраною (рис. 2). Його протяжність склала 164,4 ± 8,01 проти 226,13 ± 6,95 мкм в групі контролю (р <0,05). Під епітелієм рани дефект був заповнений зрілої грануляційної тканиною з вираженою васкуляризацией і характерним горизонтальним розташуванням фібробластів навколо судин.
Мал. 2. Епітеліальний регенерат в області рани через 5 днів після операції. Досвідчена група. Гематоксилін-еозин. Про. 40х.
Через 7 днів відмінності, відмічені нами раніше, виявилися особливо чітко. У тварин контрольної групи (ПН) спостерігалася повна епітелізація експериментальних пошкоджень. Новостворений епітеліальний пласт, що складається з декількох рядів клітин, покривав всю область дефекту протягом 629,37 ± 19,01. Його базальнамембрана мала нерівну конфігурацію, однак виростів в підлягає тканину не спостерігалося і освіти волосяних фолікулів і сальних залоз не відбувалося. Під епітелієм розташовувалася сполучна тканина з типовими клітинними структурами (рис.3).
Мал. 3. Новостворений епітелій в області рани через 7 днів після операції. Група контролю. Гематоксилін-еозин. Про. 40х.
У тварин дослідної групи (ПН + ВХ + ЦФ + АГ) рановий процес завершився формуванням органоспецифічного регенерату. Про це свідчили повна епітелізація ран, виражена контракция області пошкодження, що виражається в достовірно меншою протяжності регенерату (609,22 ± 15,01 проти 634,72 ± 18,01 мкм в контролі) і новоутворення волосяних фолікулів і сальних залоз (рис.4) .
Мал. 4. Вирости новоствореного епітелію в області рани через 7 днів після операції. Досвідчена група. Гематоксилін-еозин. Про. 40х.
висновок
Таким чином, експериментальне дослідження нового шовного матеріалу, що містить астрагерм і антибактеріальний препарат, показало ефективність його застосування при моделюванні загоєння ран шкіри первинним натягом. Включення до складу хірургічних ниток зазначених компонентів, як було показано раніше [5], призводить до менш вираженого і швидко усуває процесу запалення, що є морфологічним субстратом для утворення грануляційної тканини в області завданої травми. Активний ангіогенез і проліферація фібробластів, які супроводжують формування грануляцій, подальша їх трансформація в сполучну тканину, збільшення темпів епітелізації зони пошкодження по суті є відображенням переходу процесу загоєння ран з фази запалення в фазу проліферації [1]. Виявлені властивості нових біологічно активних шовних матеріалів, очевидно, дають підставу для перспективи їх застосування в клінічній практиці, оскільки, забезпечують зниження числа гнійних післяопераційних ускладнень, а, отже, поліпшення косметичних результатів і скорочення термінів реабілітації пацієнтів.
бібліографічна посилання
Петрова М.Б., Мохов Є.М., сергеев О.М., сєров Є.В. ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНО-гістологічний аналіз ВПЛИВУ біологічно активних шовних матеріалів НА перебігу ранового процесу В ШКІРІ // Сучасні проблеми науки та освіти. - 2015. - № 6 .;
URL: http://www.science-education.ru/ru/article/view?id=23923 (дата звернення: 29.07.2019).
Пропонуємо вашій увазі журнали, що видаються у видавництві «Академія природознавства»
(Високий імпакт-фактор РИНЦ, тематика журналів охоплює всі наукові напрямки)
Ru/ru/article/view?
